【分子信号研究】如果给肠道装上TurboID,我们能听清它对大脑的“窃窃私语”吗?

所属分类: 技术干货

发布时间: 2026-02-24

概要: 肠道分泌的蛋白究竟去往何处?为破解这一研究“黑箱”,我梳理大量文献后发现,邻近标记技术竟能实现分泌蛋白的活体示踪!今天就为大家分享“利用TurboID为分泌蛋白进行标记”的实验猜想,探讨能否从复杂的血浆背景中,精准捕捉到真正的脑肠轴“信使”分子。


肠道不只是人体的消化器官,更是一座庞大的内分泌器官。它分泌的数百种蛋白、细胞因子与胞外囊泡(EVs),如同穿梭在体内的“信使”,穿越血液循环、跨过血脑屏障(BBB),精准调控大脑的生理活动。可在实验研究中,想要捕捉到这些行踪不定的“信使”,却成了一大难题。

肠道分泌的蛋白究竟去往何处?为破解这一研究“黑箱”,我梳理大量文献后发现,邻近标记技术竟能实现分泌蛋白的活体示踪!今天就为大家分享我基于文献研究进行的“利用TurboID为分泌蛋白进行标记”的实验猜想,一同探讨能否从复杂的血浆背景中,精准捕捉到真正的脑肠轴“信使”分子。

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一、传统分泌组学解析脑肠轴分泌蛋白的瓶颈与局限

过去几个月,我尝试了各种传统分泌组学的研究方法,但每一个都像是走进了死胡同,我称之为“黑箱困境”。



体外培养的无奈:

我试过把肠道组织拿出来做离体培养。虽然拿到了纯度很高的分泌蛋白,但离体的肠道失去了神经支配、没了血流剪切力,也没了全身激素的调节。这种“温室”里测出来的数据,真的能代表体内真实的生理状态吗?



血浆蛋白组的噪音:

直接测血浆?那简直是噩梦。血液里全是肝脏、肌肉、免疫细胞分泌的高丰度蛋白。检测到某个蛋白升高了,谁敢拍胸脯说是肠道分泌的?这种“来源归属”的缺失,让我们根本没法建立因果链条。



遗传敲除的笨重:

遗做Knock-out小鼠确实金标准,但周期长、成本高,而且一次只能研究一个基因。面对成千上万未知的信号分子,这简直是大海捞针。

二、灵感乍现:活体分泌组的进展与启发


由于“抓不住”这些跨器官信号而焦虑,我开始疯狂查阅文献,想看看前沿技术都在玩什么。

在浩如烟海的资料中,有两篇研究让我眼前一亮,它们分别在小鼠和果蝇模型上实现了活体分泌组的精准追踪。虽然这两篇文章的影响因子不高,但是也给我带来了不一样的启发。

案例一:小鼠 BirA*G3介导的活体分泌蛋白

来源追踪体系构建


研究采用了一个巧妙的遗传学策略:BirA*G3小鼠模型。



核心设计:

他们把一个生物素连接酶(BirA*G3)加上了内质网滞留信号(KDEL),然后敲入到小鼠体内。这个酶就像个流水线工人,只待在内质网里。



精妙之处:

所有的分泌蛋白都要经过内质网合成折叠。所以,只要蛋白一出生,就会被盖上一个“生物素”的戳。



结果:

当他们特异性激活肝脏里的这个酶时,肝脏分泌的所有蛋白都带上了标签。通过抽血、富集、质谱,他们不仅鉴定出了肝脏分泌组,还追踪到了这些蛋白去了哪里。

这不就是我想要的“来源追踪”吗?

案例二:TurboID介导的多组织分泌蛋白

跨器官转运图谱绘制


如果说小鼠模型验证了原理,那Norbert Perrimon团队这篇研究则展示了什么是“高通量暴力美学”。



技术升级:

他们用了活性更强的TurboID,并且构建了针对10种不同组织(肌肉、脂肪、神经、肠道等)的果蝇品系。



惊人发现:

他们不仅鉴定出了535种循环蛋白,还画出了一张复杂的“跨器官物流图”。比如,他们发现了一个叫CG2444的蛋白,明明是脂肪体合成的,最后却跑到了表皮上;还有一个肌肉产生的CG6867,竟然定位到了成虫盘。

这两项研究说明:邻近标记技术(Proximity Labeling, PL)不仅能研究细胞内互作,完全可以用来做活体器官通讯!

三、技术核心:PL-MS追踪活体器官分泌蛋白


这两项研究的核心,都是邻近标记技术(Proximity Labeling,PL)。

在深入了解后,我意识到这是一场技术的革命。传统的PL技术主要用于研究细胞内的蛋白互作,但现在的思路格局打开了:利用基因工程改造的生物素连接酶(如TurboID),加上内质网滞留信号(KDEL),让酶只待在内质网里。只要是这个细胞分泌的蛋白,在离家出走前(分泌前)都会被强制打上生物素标签。

对于脑肠轴研究,这意味着可以:

  • 在肠道上皮细胞的内质网里表达邻近标记酶(如TurboID)。

  • 给肠道分泌的所有蛋白打上“出生证明”(生物素化)。

  • 这些蛋白释放入血,穿过血脑屏障进入大脑。



关键点

大脑本身没有TurboID。所以,只要我在脑子里抓到了带生物素标签的蛋白,它一定、绝对、百分之百来自肠道!

四、实验脑洞:小鼠脑肠轴肠源分泌蛋白的TurboID活体示踪实验设计


基于上述思考,我初步构想了一个针对脑肠轴的PL-MS实验方案,写出来供大家批判指正。



目标

全景式鉴定小鼠肠道分泌、并能穿越BBB进入大脑的蛋白质组。

实验路线图:

第一步:肠道上皮特异性TurboID
表达体系的构建



载体:

使用AAV病毒,搭载Villin-TurboID-KDEL元件。



策略:

Villin启动子确保只在肠道上皮表达;KDEL序列把酶锁在内质网,不让酶自己跑出去造成污染;TurboID负责高效标记。



注射方式:

放弃尾静脉(肝脏背景太高),采用肠内灌注或肠系膜上动脉注射,确保病毒只感染肠道。

第二步:小鼠体内肠源分泌蛋白的
生物素标记处理

给小鼠连续喂食含生物素的饲料或皮下注射生物素,给TurboID提供“弹药”。让它在小鼠体内工作3-7天,积累足够的标记蛋白。

第三步:脑组织靶蛋白的背景噪音
去除与样品制备

这是最关键的一步。为了区分“真的进了脑实质”的蛋白和“粘在血管壁上”的蛋白,取脑前必须进行彻底的心脏灌注,甚至要做脑组织的毛细血管耗竭处理。

第四步:生物素化蛋白的富集
与质谱检测分析

利用链霉亲和素磁珠富集脑组织里的生物素化蛋白,上机打质谱。



预期结果

抓到那些未知的肠源性神经调控因子,甚至是穿过BBB的肠道外泌体!

五、科研狗的碎碎念


当然,写下这些文字时,我深知这还是一个充满假设的猜想。

实际操作中,内源性生物素的干扰、AAV的泄漏、血脑屏障的低通透性导致信号微弱,都是巨大的坑。

但正如那篇果蝇Paper所展示的,一旦成功,我们得到将不再是散乱的蛋白列表,而是一张活体的、动态的、有明确来源归属的器官通讯地图。从“猜想”到“实证”,路漫漫其修远兮。

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参考文献


  • 1. Yang R, Meyer AS, Droujinine IA, et al. A genetic model for in vivo proximity labelling of the mammalian secretome. Open Biol. 2022;12(8):220149. doi:10.1098/rsob.220149

  • 2. Bosch JA, Beltran PMJ, Cavers C, et al. Multi-omic mapping of Drosophila protein secretomes reveals tissue-specific origins and inter-organ trafficking. Preprint. bioRxiv. 2025;2025.07.09.659702. Published 2025 Jul 11. doi:10.1101/2025.07.09.659702





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