小分子靶点筛选指南:蛋白芯片、SPR、TPP、LiP-MS的实战选择

所属分类: 技术干货

发布时间: 2025-12-17

概要: 做小分子靶点筛选这么多年,最深的感悟是:选对技术能少走一半弯路。靶点筛选作为新药研发的 “敲门砖”,精准锁定药物作用的生物靶标,直接决定了后续化合物优化的方向和临床试验的成功率。




做小分子靶点筛选这么多年,最深的感悟是:选对技术能少走一半弯路。靶点筛选作为新药研发的“敲门砖”,精准锁定药物作用的生物靶标,直接决定了后续化合物优化的方向和临床试验的成功率。


目前行业内最常用的四大核心技术 —— 蛋白芯片、SPR(表面等离子体共振)、TPP(热蛋白组分析)和 LiP-MS(限制性蛋白水解 - 质谱),各有适配场景,但很多研究者都会混淆:蛋白芯片和 SPR 都带 “芯片”,到底有啥本质区别?TPP 和 LiP-MS 这些无标记质谱技术,真的能解决传统方法的痛点吗?


今天就结合实战经验,从原理、优劣势、适用场景三个维度把这四项技术讲透,帮大家精准选型、避开坑点。



一、先分清两个 “芯片”:蛋白芯片的 “广撒网” vs SPR 的 “精验证”


很多刚入门的朋友会被 “芯片” 误导,觉得二者是同类技术,其实它们一个负责 “初筛找候选”,一个负责 “验证定强弱”,完全对应靶点筛选的两个核心阶段。


1. 蛋白芯片:高通量初筛的“靶点捕手”



做早期项目时,手里握着活性小分子,却完全不知道它跟哪个蛋白结合 —— 这时候蛋白芯片绝对是首选。




核心原理

特别直观,就是把数千到两万种全长人类蛋白(比如常用的 HuProt™芯片)固定在玻片上,形成高密度的 “蛋白阵列”。实验时需要先给小分子做荧光或生物素标记,再让它跟芯片孵育,洗去没结合的部分后,通过荧光信号就能判断 “哪些蛋白跟药物有相互作用”。




实战优劣势

优势不用多说,通量是真的高!一次实验能覆盖人类蛋白质组的 70%-80%,相当于给靶点做了一次 “全景扫描”,快速圈定候选名单,省去了逐个验证的麻烦,尤其适合找全新靶点或排查脱靶效应。


但用过的人都知道,它有个绕不开的问题:必须对小分子进行化学修饰(标记)。这也是我们踩过坑的地方 —— 有时候标记会破坏药物的构效关系,导致 “本来能结合的靶点没检测到(假阴性)”,或者引入非特异性结合(假阳性),后续还得花时间验证。另外,它只能告诉你 “结合了” 或 “没结合”,没法给出精准的结合强度数据。




适用场景

项目早期,未知靶点的大规模初筛。比如手里有活性分子,但对作用靶点一无所知,用它快速锁定一批候选蛋白,为后续验证打基础。


2. SPR:动力学验证的 “金标准”



当蛋白芯片筛出 3-5 个候选靶点后,就该 SPR 登场了 —— 它的核心作用是“量化结合强度”,给出能直接用于论文或项目申报的精准数据。




核心原理

基于物理光学的折射率变化,跟蛋白芯片的 “标记检测” 完全不同。实验时把候选靶蛋白固定在传感器芯片的葡聚糖基质上,让未标记的小分子药物溶液流过芯片表面,一旦药物与蛋白结合,芯片表面的折射率就会变,传感器能实时捕捉这个变化,算出三个关键参数:结合速率(Kon)、解离速率(Koff)和亲和力常数(KD)。





实战优劣势

● 最大的亮点是 “免标记”,能直接用原药实验,完全保留药物的天然活性,这也是它数据精准的关键。而且样本需求量特别小(微升级),能精准判断药物与靶点的结合特异性,是验证靶点的 “金标准”。


● 缺点也很明显:通量低,一次只能测几个到几十个样品;对蛋白纯度和活性要求极高 —— 如果蛋白纯化不到位,实验根本做不出可靠结果,这也是它成本偏高的原因。




适用场景

候选靶点的动力学验证。比如要确认“药物是否真的结合这个靶点”“结合强度够不够”,或者比较不同先导化合物的亲和力,SPR 都是不可替代的选择。


二、无标记革命:TPP 与 LiP-MS 破解传统技术的 “痛点”



做项目到深水区就会发现,蛋白芯片和SPR 再好用,也绕不开两个灵魂拷问:


“加了生物素标签,我的药物活性还在吗?”


“芯片上的纯化蛋白,真的能代表细胞里的真实状态吗?”


确实,传统技术要么依赖标记,要么用体外纯化蛋白,结果往往跟细胞内的真实情况有偏差。而 TPP 和 LiP-MS 代表的无标记质谱技术,正是冲着这两个痛点来的,堪称复杂场景下的“破局者”。


1. TPP:活细胞内的 “真实结合验证工具”


如果想知道药物在细胞内到底跟哪个蛋白结合,TPP 是我们最常推荐的技术 —— 它能还原细胞内的微环境,结果的生理相关性特别强。




核心原理

很有意思,药物与靶蛋白结合后,会让蛋白的热稳定性提高(简单说就是 “变硬了”,更耐高温)。实验时把细胞裂解液或完整活细胞跟原药孵育,然后梯度升温,没结合药物的蛋白会逐步变性沉淀,再用质谱检测上清中可溶性蛋白的丰度变化,画出热稳定性曲线 —— 如果某蛋白的曲线明显偏移,就说明它是药物的潜在靶点。




实战优劣势

● 优势太突出了:无标记,直接用原药;支持活细胞实验,保留了蛋白复合物、辅因子,结果贴近真实生理状态;通量也高,能一次评估数百种蛋白。而且数据处理有成熟的 R 包,不用自己瞎琢磨。


● 但它也有局限:它只能告诉你 “结合了”,没法定位具体的结合位点,后续需要搭配其他技术验证。




适用场景

细胞内靶点验证、脱靶效应评估:比如蛋白芯片筛出候选后,用 TPP 确认 “这个靶点在细胞内真的能跟药物结合”;或者评估药物的安全性,排查可能的脱靶蛋白。


2. LiP-MS:精准到肽段的 “结合位点探测器”



如果 TPP 没检测到信号,但你确信药物和靶点有结合,或者想知道药物具体结合在蛋白的哪个区域 —— 那一定要试 LiP-MS,它的分辨率是四大技术里最高的。




核心原理

利用蛋白酶的 “酶切效应”—— 药物结合蛋白后,会形成空间位阻或改变蛋白构象,让结合区域的肽段不被蛋白酶(比如 Proteinase K)切开。通过质谱检测药物处理前后的肽段丰度变化,不仅能锁定靶蛋白,还能根据受保护的肽段位置,推测出结合口袋(Binding Pocket)的位置。




实战优劣势

● 最大的亮点是 “肽段级分辨率”,能解决 TPP 的短板 —— 不仅找靶点,还能给药物设计提供结构信息。而且它能检测到变构效应,对于那些结合后不改变热稳定性,但会影响蛋白构象的相互作用,LiP-MS 是唯一的选择。


● 缺点是实验条件太敏感:酶切时间、比例稍微没控制好,结果就会偏差;数据处理也比较复杂,需要专业的软件和统计学方法,新手入门得花点时间。




适用场景

结合位点定位、变构调节剂研究。比如要明确药物结合在蛋白的哪个结构域,或者 TPP 检测阴性但确信有结合的场景,LiP-MS 能给出精准答案。


三、实战对比表:直接对照选技术


整理了一张项目中最常用的对比表,关键维度都列全了,大家可以直接对着自己的需求选:



四、分场景选型建议:按项目阶段精准选



结合我们踩过的坑、总结的经验,给大家分场景明确建议,直接照用就行:


1. 项目早期・未知靶点初筛



手里有活性小分子,但对靶点一无所知 —— 首选蛋白芯片。利用它的高通量优势,快速圈定一批候选靶点;如果想初步看一下亲和力,也可以搭配高通量 SPR 做辅助筛选。


【注意】蛋白芯片的标记可能带来假阳 / 阴性,筛出的候选靶点,一定要用 TPP 做细胞内验证,确认结合的真实性。


2. 候选靶点・验证与量化



已经锁定 3-5 个候选靶点,需要确认结合特异性和强度 —— 必选 SPR。它给出的 KD、Kon、Koff 参数是论文和项目申报的 “硬数据”,能直接支撑后续的药物优化。


3. 细胞内真实结合・脱靶效应分析



想知道药物在细胞内的真实作用靶点,或者评估安全性(脱靶效应)—— 首选 TPP。它能在活细胞环境中捕捉结合事件,同时发现直接和间接靶点,是评估药物作用谱的关键工具。


4. 结合位点・构效关系研究



需要明确药物结合的具体区域,或研究变构调节剂 —— 首选 LiP-MS。如果 TPP 检测阴性但确信有结合,用 LiP-MS 大概率能找到答案,还能为药物结构优化提供直接依据。


结语


做靶点筛选这么多年,最大的感悟是:技术没有好坏,只有适配与否。


蛋白芯片胜在 “广”,能快速打开局面;SPR 胜在 “精”,能夯实验证数据;TPP 和 LiP-MS 胜在 “真”,能还原细胞内的真实相互作用。我们踩过的标记影响活性、体外结果无法复现的坑,就是希望大家能根据项目阶段精准选型,少点纠结,多点高效。


如果正在为探针设计、结果复现头疼,不妨试试 TPP 和 LiP-MS 的无标记方案 —— 让药物在 “原生态” 中展现真实靶点,可能会少很多意外惊喜。


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✔ 多种数据分析策略:结合蛋白热变性曲线分析和非参数分析方法(NPARC),全面捕获潜在药物靶点


✔ 多种生信分析数据库挖掘辅助筛选:对潜在药物靶点进行生信分析与数据库挖掘,辅助最终药物靶点的确认


✔ 多种衍生技术可选:除常规温度范围(TPP-TR)、药物浓度范围(TPP-CCR)、两者结合(2D-TPP)的常规热蛋白组分析方法外,还可进行单温度点(ITSA)、多温度点混合(PISA)等高通量热蛋白组分析方法


参考文献


  • [1] Sun B, Xu J, Liu S, Li QX. Characterization of Small Molecule-Protein Interactions Using SPR Method. Methods Mol Biol. 2023;2690:149-159. doi:10.1007/978-1-0716-3327-4_15


  • [2] Sauer P, Bantscheff M. Thermal Proteome Profiling for Drug Target Identification and Probing of Protein States. Methods Mol Biol. 2023;2718:73-98. doi:10.1007/978-1-0716-3457-8_5


  • [3] Malinovska L, Cappelletti V, Kohler D, et al. Proteome-wide structural changes measured with limited proteolysis-mass spectrometry: an advanced protocol for high-throughput applications. Nat Protoc. 2023;18(3):659-682. doi:10.1038/s41596-022-00771-x


  • [4] Pepelnjak M, de Souza N, Picotti P. Detecting Protein-Small Molecule Interactions Using Limited Proteolysis-Mass Spectrometry (LiP-MS). Trends Biochem Sci. 2020;45(10):919-920. doi:10.1016/j.tibs.2020.05.006





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