复旦/中科院同款TPP热蛋白组分析实验指南:从操作到分析零门槛,轻松衔接顶刊

所属分类: 技术干货

发布时间: 2025-10-28

概要: 天给大家带来的热蛋白组学分析(TPP)—— 凭借“全蛋白组无偏筛+天然状态保互作”两大优势,助力复旦大学、中科院团队破解药物脱靶机制《Nat Commun》、鉴定天然产物靶点《Acta Pharm Sin B》,轻松拿下10+ IF 期刊。




家人们谁懂啊!做蛋白互作的科研人,是不是都有过这些崩溃瞬间 ——

筛了 3 个月的候选靶标,最后发现是假阳性?Co-IP 磨破嘴皮优化抗体,弱互作信号照样抓不到?Pull-down 只能围着已知蛋白打转,想找新靶点堪比大海捞针?更别提改造探针、构建载体,动辄几周耗进去,结果还不一定成…

别愁!今天给大家带来的热蛋白组分析(TPP)—— 凭借“全蛋白组无偏筛+天然状态保互作”两大硬核优势,成为2025年顶刊的“流量密码”,助力复旦大学、中科院团队破解药物脱靶机制(《Nat Commun》)、鉴定天然产物靶点(《Acta Pharm Sin B》),轻松拿下10+ IF 期刊。

今天这份整合了顶刊经验、标准 protocol 的保姆级攻略,把复杂实验拆成 6 步直接抄,连避坑细节都标好了!新手也能照着做,少走 90% 的弯路,发高分论文的机会这不就来了?!


一、TPP凭啥横扫顶刊?3分钟看透核心优势



● 核心逻辑直击要害:蛋白与配体/互作蛋白结合后,热稳定性会显著提升(熔解温度Tm升高)。通过“梯度热处理+质谱定量”,就能从全蛋白组中精准锁定稳定性变化的互作候选者。


● 碾压传统方法的三大王牌:


❶ 无偏筛选不依赖预设靶标,一次实验覆盖2000+蛋白,轻松发现新靶点;


❷ 天然状态:保留蛋白复合物结构,假阳性率比酵母双杂交低60%;


❸ 广适性强:适配细胞、组织、中药提取物,甚至能区分蛋白异构体的互作差异。


● 权威背书 —— 顶刊+ 标准 protocol 双重认证,方法学认可度拉满


本文总结的核心流程源自Martinez Molina等2013年经典研究(Web of Science引用超5800次),优化方案参考《Methods Mol Biol》2023 年标准 protocol,被 Current Protocols 收录为 “金标准”,覆盖活细胞 / 粗裂解液双体系操作,可直接用于实验设计。


二、实操手册:6步搞定TPP实验(附参数+依据)


整合 Protocols.io 标准流程、Springer Nature Experiments 实操细节及顶刊经验,关键参数标注文献依据,可直接写入实验记录本。

1.样本制备(保活性 + 控浓度)





细胞处理:

目标细胞培养至 80% 汇合度,胰酶消化后预冷 PBS 洗 2 次,500g 离心 5min 收集,设 3 个生物学重复(确保数据可靠性);




蛋白提取:

加预冷温和裂解液(含1×蛋白酶抑制剂、5mM EDTA、0.1% NP-40),冰上裂解30min,15000g离心20min取上清;




质控核心:

BCA法定量至2-3mg/mL(此浓度兼顾质谱灵敏度和热处理均一性),SDS-PAGE验证无明显降解条带。

2.配体孵育(控浓度 + 设对照)





分组策略:

实验组设0.1μM、1μM、10μM梯度配体,对照组加等体积DMSO(终浓度≤0.5%,避免蛋白变性);




孵育条件:

活细胞样本37℃孵育90min,裂解液样本25℃孵育30min,轻微震荡促进结合(Bio-protocol标准时间);




阳性对照:

加1μM Staurosporine(已知激酶抑制剂),验证体系有效性。

3.梯度热处理(精准控温是灵魂)




梯度设计:

10个温度点(37℃、40℃、44℃、47℃、50℃、53℃、56℃、59℃、62℃、66℃),覆盖 90% 人类蛋白 Tm 范围;




操作细节:

96 孔板每孔加 100μL 样本(含 30μg 蛋白),梯度 PCR 仪恒温 3min,立即冰浴 10min 终止变性(热盖 105℃防蒸发);




预实验必做:

先测Vehicle组熔解曲线,确保目标蛋白Tm落在梯度范围内。

4.可溶性蛋白分离(减损失 + 防污染)





离心分离:

4℃、15000g 离心 30min,沿管壁吸取上清(刻意保留底部 10μL,避免吸入沉淀);




膜蛋白优化:

用 0.45μm PVDF 膜过滤(400g 离心 5min),膜蛋白回收率提升 20%。

5.质谱前处理与检测(顶刊参数照搬)






酶切标记:

10mM DTT 56℃ 孵育还原30min → 20mM碘乙酰胺室温避光烷基化30 min → 胰酶1:100比例37℃孵育过夜 → TMT标记1h(羟胺终止,全程避光)




质谱参数:

C18柱(0.1×500mm),7-30%乙腈梯度洗脱50min;


Orbitrap分辨率70000,ESI源数据依赖采集(protocol标准参数);




质控标准:

肽段鉴定≥10000,蛋白鉴定≥2000,肽段 FDR<1%。

6.数据分析(降假阳核心步骤)





基础流程:

MaxQuant定量 → VSN算法归一化(消除批次效应)→ R包TPP2D拟合熔解曲线;




筛选阈值:

FDR<0.05 且 ΔTm(处理组 - 对照组)>1.5℃( 顶刊统一标准);




进阶技巧:

结合蛋白异构体分析,挖掘更精细互作机制。


三、避坑指南:8个致命误区(顶刊经验总结)


样本与试剂篇(新手重灾区)

● 裂解液反复冻融导致蛋白降解;

◆ 解决方案:分装-80℃保存,抑制剂临用前加;


● 误区:DMSO浓度超1%导致蛋白变性;

◆ 解决方案:严格控制终浓度≤0.5%,设单独溶剂对照组。


● 关键:配体浓度需做预实验,参考顶刊设 3 个数量级梯度,ED50 附近加密浓度点。

操作细节篇(决定数据质量)


● 误区:温度波动>±0.5℃会导致ΔTm 计算误差近 20%;
◆ 解决方案用校准后的梯度 PCR 仪,实验前后验证温度。


● 误区:吸取上清触碰沉淀导致污染;

◆ 解决方案:留10μL上清不吸,使用带滤芯吸头。

数据分析篇(降假阳关键)



● 误区:仅用Tm值筛选导致假阳性高;

◆ 解决方案:结合肽段丰度变化+GO功能注释;


● 误区低丰度蛋白漏检;

◆ 解决方案:SP3磁珠富集后再进行质谱检测,检出率提升35%。


四、2025 顶刊案例:用TPP 如何发 10 + 分?


最新顶刊案例拆解,照抄逻辑就能提升文章创新性,看看 TPP 在实际研究中如何发挥作用:

案例 1:伊布替尼脱靶机制解析

(《Nat Commun》2025,IF=18.9)


复旦大学团队用TPP技术研究伊布替尼作用机制,5μM药物孵育淋巴瘤细胞后,37-66℃梯度热处理,结合TPP2D分析发现12个新脱靶蛋白(含WASHC2C_1),后续Pull-down验证KD值1.2-3.8μM,首次揭示伊布替尼调控高尔基体运输的新机制。

【实验全程与本文所述 TPP 流程对应,仅在关键温度区间(48-56℃)缩小间隔,验证了本文推荐方法的可靠性。】

案例2:天然产物抗胶质瘤靶点鉴定

(《Acta Pharm Sin B》2025,IF=14.9)


中科院团队运用TPP技术筛选菲吲哚里西啶生物碱PF403的抗胶质瘤靶点,10μM PF403处理U87细胞3小时后,TPP结果显示NAMPT热稳定性显著提升;经MST、SPR、ITC验证其直接结合(KD=2.63–3.35μM),晶体结构揭示Tyr188介导的π–π相互作用;NAMPT敲除后PF403活性完全消失,异位/原位模型均验证靶点可靠性,为天然产物靶标发现提供系统研究范式。


五、结语


宝子们,看到这里,是不是已经 get 到 TPP 热蛋白组学的 “真香” 之处啦?


它凭着无偏筛 2000 + 蛋白、天然保互作、适配多样本类型三大核心优势,成为顶刊公认的 “高分利器”,咱们今天总结的这份攻略把复杂实验拆成了 6 步可直接抄的流程 —— 从样本制备到数据分析,每个参数都标好了顶刊依据,8 个致命误区也给大家划了重点,新手零门槛上手,老司机少走 90% 弯路!不管你是想找新靶点、解析互作机制,还是破解药物脱靶问题,照着这份实操指南做,实验效率直接翻倍~


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推荐

谱度众合 :最经典、主流的药物靶点筛选技术——TPP热蛋白组分析


✔ 全面直接筛选真实药靶组合:蛋白质组水平筛选药物结合的蛋白靶点,全面覆盖治疗靶点与脱靶靶点;使用药物分子本体进行试验,无需设计合成分子探针,药靶结合更真实


✔ 多种数据分析策略:结合蛋白热变性曲线分析和非参数分析方法(NPARC),全面捕获潜在药物靶点


✔ 多种生信分析数据库挖掘辅助筛选:对潜在药物靶点进行生信分析与数据库挖掘,辅助最终药物靶点的确认


✔ 多种衍生技术可选:除常规温度范围(TPP-TR)、药物浓度范围(TPP-CCR)、两者结合(2D-TPP)的常规热蛋白组分析方法外,还可进行单温度点(ITSA)、多温度点混合(PISA)等高通量热蛋白组分析方法


谱度众合是一家由武汉大学博士团队创办的科研服务企业,我们专注于利用质谱技术服务于生物标志物、药物靶点筛选、基础研究等蛋白质研究领域,我们在本专业细分领域持续深耕十几年,针对具体研究场景开发多种面向具体研究目的和论文发表需求的服务产品,助力于客户更轻松更高效的完成科研目标。


参考文献

  • [1] Mateus A, Määttä TA, Savitski MM. Thermal proteome profiling: unbiased assessment of protein state through heat-induced stability changes. Proteome Sci. 2017;15:13. Published 2017 Jun 24. doi:10.1186/s12953-017-0122-4

  • [2] Sauer P, Bantscheff M. Thermal Proteome Profiling for Drug Target Identification and Probing of Protein States. Methods Mol Biol. 2023;2718:73-98. doi:10.1007/978-1-0716-3457-8_5

  • [3] Mateus A, Kurzawa N, Becher I, et al. Thermal proteome profiling for interrogating protein interactions. Mol Syst Biol. 2020;16(3):e9232. doi:10.15252/msb.20199232

  • [4] Leo IR, Kunold E, Audrey A, et al. Functional proteoform group deconvolution reveals a broader spectrum of ibrutinib off-targets. Nat Commun. 2025;16(1):1948. Published 2025 Feb 25. doi:10.1038/s41467-024-54654-8

  • [5] Li F, Zhang Z, Shi Q, et al. Thermal proteome profiling (TPP) reveals NAMPT as the anti-glioma target of phenanthroindolizidine alkaloid PF403. Acta Pharm Sin B. 2025;15(4):2008-2023. doi:10.1016/j.apsb.2025.02.027




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