服务案例Adv Sci(IF:14.1) | IP-MS解密ZNRD2与RSV核蛋白“双向拮抗”的聚集抗病毒机制

所属分类: 技术干货

发布时间: 2026-05-17

概要: 今天为大家解读一项发表于跨学科顶级期刊Advanced Science的最新研究,该研究聚焦于呼吸道合胞病毒(RSV)与宿主细胞之间的动态博弈,首次揭示了宿主蛋白ZNRD2通过诱导病毒核蛋白(N)形成不溶性聚集体来限制病毒复制的全新机制。



期刊名称:Advanced Science

发表时间:2026年1月

影响因子:14.1

期刊分区:JCR 1区/中科院 1区

服务单位:武汉大学

服务产品:IP-MS蛋白互作组研究解决方案

服务团队:丛欣宇、谢宇峰、周欣

样本类型:HEK293T细胞、HeLa细胞、HEp-2细胞等人类细胞系

其他信息:基因敲除(CRISPR-Cas9)、AlphaFold3蛋白结构预测

今天为大家解读一项发表于跨学科顶级期刊Advanced Science的最新研究,标题为“ZNRD2 Mediated Nucleoprotein Aggregation Impairs Respiratory Syncytial Virus Replication”。该研究聚焦于呼吸道合胞病毒(RSV)与宿主细胞之间的动态博弈,首次揭示了宿主蛋白ZNRD2通过诱导病毒核蛋白(N)形成不溶性聚集体来限制病毒复制的全新机制。

本研究由武汉大学陈明周教授团队主导完成,研究团队利用谱度众合提供的IP-MS蛋白互作组研究解决方案,从复杂的细胞裂解物中精准捕获并鉴定了RSV N蛋白的关键宿主互作因子——ZNRD2,为解析“ZNRD2-RSV N”这一双向拮抗的蛋白质聚集调控网络提供了不可或缺的核心证据,有力推动了病毒-宿主互作分子机制研究的进展。

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01
研究背景

呼吸道合胞病毒(RSV)是全球婴幼儿、老年人及免疫低下人群急性下呼吸道感染的首要病原体,每年导致超过3300万例感染病例、5岁以下儿童中死亡人数超过10万,且与哮喘等慢性呼吸道疾病密切相关。当前RSV疫苗可及性有限,抗病毒靶点匮乏已成为临床治疗的核心瓶颈。

RSV属于单股负链RNA病毒。其核蛋白(N)的寡聚化是病毒基因组包装、复制与转录的核心前提;然而,宿主细胞如何调控N蛋白功能并介导抗病毒防御,其分子机制长期处于未知状态。因此,筛选RSV N蛋白的宿主特异性互作蛋白,是破解病毒-宿主拮抗机制、开发新型抗病毒策略的核心突破口。


02
研究设计

本研究采用“互作网络多组学筛选-分子机制解析-功能与结构确证”的系统性研究范式:

 互作网络筛选:利用谱度众合提供的IP-MS蛋白互作组研究解决方案,在全蛋白质组层面高通量筛选与RSV N蛋白相互作用的宿主因子,精准锁定ZNRD2。

 型与机制解析:结合溶解度分级分离、定点突变等生化手段,证实ZNRD2依赖于N蛋白的寡聚化来增强其不溶性,而非诱导其降解。

❸ 结构预测与网络拮抗:利用AlphaFold3预测ZNRD2-RSV N的复合物界面;并在分子水平上阐明了RSV磷蛋白(P)如何通过维持N蛋白的单体构象来反向拮抗该过程。


03
核心研究发现
【寻靶】突破核酸结合干扰,IP-MS精准锁定宿主防御核心枢纽ZNRD2

为在全蛋白质组层面筛选与呼吸道合胞病毒(RSV)核蛋白(N)直接互作的宿主防御因子,本研究以Myc标签标记的RSV N蛋白为诱饵,采用谱度众合IP-MS蛋白互作组研究解决方案,在HEK293T细胞中完成了全蛋白质组层面的互作蛋白筛选。在鉴定出的RNF40、TOP2A、LARP1等候选蛋白中,ZNRD2是富集度最高、特异性最强且功能尚未被深入解析的核心互作分子。鉴于RNF40、TOP2A、LARP1均具有核酸结合特性,其与N蛋白的结合可能源于N蛋白强RNA结合能力带来的非特异性互作,研究最终聚焦ZNRD2展开深入验证。后续内源性共免疫沉淀(Co-IP)实验进一步证实,ZNRD2与RSV N存在直接的物理结合,彻底排除了RNA介导的非特异性互作干扰,为整个研究锁定了唯一的核心功能靶点。

基于IP-MS提供的高质量互作组学线索,研究团队结合CRISPR-Cas9基因敲除、shRNA敲低及稳定过表达细胞系构建等功能验证体系,系统证实:ZNRD2不仅可与RSV N蛋白发生特异性结合,还能显著降低RSV病毒滴度、抑制病毒基因组复制与基因表达,最终将ZNRD2鉴定为靶向RSV的新型宿主限制性防御因子。

【破译】打破传统降解认知,揭示ZNRD2“物理封锁”病毒蛋白的聚集新机制

实验初期,当ZNRD2与RSV N蛋白共表达时,全细胞裂解液中RSV N蛋白水平出现异常降低,研究团队最初推测其可能被ZNRD2介导降解。为厘清这一现象,研究通过放线菌酮(CHX)追踪蛋白半衰期,并结合蛋白酶体抑制剂(MG132)和溶酶体抑制剂(氯喹,CQ)干预实验,彻底排除了蛋白酶体或溶酶体介导的经典蛋白水解途径。

随后,研究采用溶解度分级分离实验,结合不同强度裂解液处理,系统分析了蛋白的分布状态。结果证实,RSV N蛋白并未发生降解,而是ZNRD2特异性改变了其溶解度,驱动N蛋白从具有生物学功能的可溶性单体转变为无功能的不溶性聚集体并被“扣押”,最终通过物理隔离功能性N蛋白的方式抑制RSV复制。

【溯源】深挖病理聚集动力,证实“双向寡聚化”是驱动不溶性复合物形成的关键

为解析ZNRD2-RSV N不溶性聚集的分子驱动力,研究团队引入了DSS化学交联技术捕捉蛋白的寡聚化水平;同时,构建了RSV N蛋白的寡聚化缺陷突变体,并利用氨基酸截短与定点突变技术,精细定位了ZNRD2序列中的关键疏水基序(L180、L183、I184)。

交联与突变功能验证结果一致表明:单体形式的RSV N完全丧失与ZNRD2结合并形成不溶性复合物的能力;同时,ZNRD2自身的寡聚化潜能也是复合物形成的必要条件。该结果明确指出,蛋白寡聚化是ZNRD2与RSV N形成不溶性复合物的核心先决条件。

【交锋】解析动态博弈网络,揭秘病毒P蛋白如何精准破坏宿主防御体系

为阐明ZNRD2-RSV N复合物的空间互作界面与病毒的拮抗机制,研究采用AlphaFold3进行复合物结构建模,预测出二者的互作界面,并指导了ZNRD2 D32/RSV N K351关键位点的突变验证。同时,利用激光共聚焦显微镜开展亚细胞定位分析,结合RSV P蛋白野生型及其N结合缺陷突变体(F241A),直观揭示了宿主与病毒在细胞内的动态拮抗过程。

成像与生化数据共同证实:在真实感染过程中,RSV可通过精巧的机制对抗宿主限制。病毒的P蛋白作为N蛋白的专属分子伴侣,通过结合N蛋白并将其稳定维持在单体构象,从而完全阻断ZNRD2与N蛋白的结合、共定位及不溶性聚集的形成,高效拮抗ZNRD2的抗病毒作用,展现了病毒对抗宿主防御的精准反制策略。

【反噬】评估系统生理代价,证实病毒“反向劫持”导致宿主蛋白质稳态失衡

ZNRD2在细胞内的核心生理功能是作为分子衔接蛋白,桥接E3泛素连接酶与CCT分子伴侣的孤儿亚基(以CCT4为核心靶点),介导其泛素化降解,从而维持伴侣蛋白组装的质量控制。为探究RSV感染对宿主细胞生理功能的扰动,研究通过外源共表达体系与ZNRD2敲除细胞回补实验,系统解析了CCT亚基的蛋白稳态变化。

实验结果明确:RSV N蛋白可通过逆向扣押将ZNRD2裹挟至不溶性聚集体中,使其完全丧失伴侣蛋白组装质控的生理活性;该过程导致本应被降解的CCT孤儿亚基异常稳定并发生累积。这一机制不仅帮助病毒逃逸宿主防御,更直接破坏了细胞整体的蛋白质稳态,为阐明RSV的致病机制提供了全新的分子层面解释。



04
研究结论
核心机制:

首次鉴定ZNRD2为新型抗RSV宿主限制因子,通过介导RSV N蛋白寡聚化与不溶性聚集抑制病毒复制;RSV通过P蛋白拮抗该效应,同时利用N蛋白劫持宿主功能,形成双向拮抗的病毒-宿主互作新机制。

理论突破:

打破了“病毒蛋白寡聚化仅促进复制”的传统认知,提出宿主利用蛋白聚集靶向病毒核蛋白的全新抗病毒范式,为负链RNA病毒研究提供了新的方向。

转化价值:

明确ZNRD2-RSV N互作轴为抗RSV药物开发的全新靶点,为研发广谱抗负链RNA病毒药物奠定了分子基础。


05
研究亮点与创新性


Q1 在抗病毒天然免疫机制方面,该研究取得了怎样颠覆性的理论突破?

A1:本研究打破了传统认知中“宿主因子通过诱导病毒蛋白降解或抑制转录来抗病毒”的局限,首次提出“宿主介导的病理性聚集”这一全新抗病毒范式。研究发现,宿主因子ZNRD2犹如一种“溶解度调节剂”,巧妙利用了病毒核蛋白(N)天然的寡聚化倾向,将其物理封锁在无活性的不溶性沉淀中。这种靶向大分子病毒核糖核蛋白的聚集机制,类似于神经退行性疾病中的朊病毒现象,为开发针对负链RNA病毒的新型抗病毒策略提供了前所未有的视角。

Q2 该研究在揭示“病毒-宿主”动态博弈网络上有何独特创新?

A2: 研究并未止步于单向的宿主防御机制,而是深刻揭示了“抗病毒防御与细胞蛋白质稳态的进化权衡”。研究证明,在病毒与宿主的极限拉扯中,RSV的N蛋白会“反向劫持”ZNRD2,导致宿主负责CCT分子伴侣组装质量控制的生理通路瘫痪。这种深度的“双向拮抗”机制解析,完美解释了RSV感染如何引起宿主细胞内短暂的蛋白质稳态失衡,填补了该领域致病机理的空白。

Q3 谱度众合的IP-MS蛋白互作组技术,为何能成为破解这一顶刊机制的关键“钥匙”?

A3: 寻找病毒核蛋白的靶向宿主因子一直面临巨大技术挑战:核蛋白极易结合大量非特异性的RNA结合蛋白(如本研究初期出现的TOP2A和LARP1),导致假阳性极高。借助谱度众合提供的高分辨率IP-MS蛋白互作组研究解决方案,研究团队成功穿透了复杂的核酸结合“噪音”干扰。精准、定量的质谱数据一锤定音地锁定了丰度最高且不依赖RNA结合的特异性靶标ZNRD2,为后续跨越多组学验证与AlphaFold3结构预测锚定了唯一正确的方向。这充分证明,高质量的互作组学筛选是推动跨学科顶刊成果产出的核心底层引擎。


编者总结


本研究展示了一场精彩的分子级别“微观战争”:宿主蛋白ZNRD2试图通过“拥抱”病毒N蛋白使其沉淀失效,而病毒则利用P蛋白进行解围,甚至反向破坏宿主的蛋白质稳态系统。

在深度揭示这一复杂机制的源头,谱度众合提供的IP-MS蛋白互作组研究解决方案发挥了关键的技术支撑作用:成功从庞杂的背景中捕获并确证了ZNRD2这一核心节点,为构建完整的“聚合-抗病毒”信号轴提供坚实、严谨的分子互作证据。基于这一底层发现,未来针对负链RNA病毒的药物开发,有望开辟一条诱导病毒靶蛋白功能性聚集的全新治疗策略。

撰写人:李维丽

审核人:肖宇琴



参考文献


  • Zhou H, He M, Du J, et al. ZNRD2 Mediated Nucleoprotein Aggregation Impairs Respiratory Syncytial Virus Replication. Adv Sci (Weinh). 2026;13(12):e08811. doi:10.1002/advs.202508811



本文由谱度众合“生物标志物发现与药物靶点筛选平台”(该平台被认定为“国家生物产业基地公共服务平台”)完成蛋白质组学检测及分析工作。




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